Аналоги MOG для изучения фармакофора MCT2, α

Новости

ДомДом / Новости / Аналоги MOG для изучения фармакофора MCT2, α

Jul 17, 2023

Аналоги MOG для изучения фармакофора MCT2, α

Коммуникационная биология, том 5, номер статьи: 877 (2022) Цитировать эту статью 1378 Доступов 1 Цитирований 12 Подробности об альтметрических метриках Исправление издателя к этой статье было опубликовано 27

Биология связи, том 5, Номер статьи: 877 (2022) Цитировать эту статью

1378 Доступов

1 Цитаты

12 Альтметрика

Подробности о метриках

Исправление издателя к этой статье было опубликовано 27 сентября 2022 г.

Эта статья обновлена

α-кетоглутарат (αKG) является центральным метаболическим узлом, оказывающим широкое влияние на клеточную физиологию. Аналог αKG N-оксалилглицин (NOG) и его проницаемое через мембрану производное пролекарства диметилоксалилглицин (DMOG) широко использовались в качестве инструментов для изучения пролилгидроксилаз (PHD) и других αKG-зависимых процессов. В средах для культивирования клеток ДМОГ быстро превращается в МОГ, который проникает в клетки через монокарбоксилатный транспортер МСТ2, что приводит к внутриклеточным концентрациям NOG, которые достаточно высоки, чтобы ингибировать ферменты глутаминолиза и вызывать цитотоксичность. Следовательно, степень нестабильности (D)MOG вместе с уровнями экспрессии MCT2 определяют внутриклеточные мишени, с которыми взаимодействует NOG, и, в конечном итоге, его влияние на жизнеспособность клеток. Здесь мы разработали и охарактеризовали серию аналогов MOG с целью улучшения стабильности соединения и изучения функциональных требований для взаимодействия с MCT2, относительно малоизученным членом семейства SLC16. Мы сообщаем об аналогах MOG, которые сохраняют способность проникать в клетки через MCT2, и идентифицируем соединения, которые не ингибируют глутаминолиз и не вызывают цитотоксичность, но все же могут ингибировать PHD. Мы используем эти аналоги, чтобы показать, что в наших экспериментальных условиях активация mTORC1, индуцированная глутаминолизом, может быть отделена от активности PHD. Таким образом, эти новые соединения могут помочь устранить клеточные эффекты, возникающие в результате полифармакологического действия NOG.

Изучению метаболизма уже давно помогает использование аналогов метаболитов, которые позволяют быстро и обратимо ингибировать ферменты и пути в различных экспериментальных условиях1. В области метаболизма рака аналоговые соединения, такие как 2-дезоксиглюкоза, 6-диазо-5-оксо-L-норлейцин (ДОН) и дихлорацетат (DCA), продолжают дополнять генетические подходы для анализа сильных и уязвимых сторон, связанных с онкогенными заболеваниями. метаболические изменения в опухолях2,3,4. Аналоги метаболитов также входят в число наиболее важных клинически используемых химиотерапевтических соединений: гемцитабин и 5-фторурацил (5-ФУ), аналоги нуклеозидов, используемые в терапии рака поджелудочной железы и колоректального рака; к метотрексату и пеметрекседу, аналогам фолиевой кислоты, применяемым для лечения ряда злокачественных новообразований5,6. Таким образом, разработка и усовершенствование аналогов метаболитов может предоставить ценные инструменты для механистических исследований как метаболизма, так и онкогенеза.

α-кетоглутарат (αKG) является ключевым метаболическим узлом, и пониманию его сложной биологии способствовал структурный аналог N-оксалилглицин (NOG), который широко использовался in vitro вместе с его проницаемым для клеток производным диметилоксалилглицином (DMOG). )7,8,9 (рис. 1а). Чаще всего ДМОГ используется для активации передачи сигналов гипоксии путем ингибирования ферментов пролилгидроксилазного домена (PHD), что приводит к стабилизации фактора транскрипции Hypoxia Inducible Factor 1α (HIF1α)8,10. Стабилизация HIF1α является терапевтической целью при состояниях, варьирующихся от ишемии и анемии до воспалительных заболеваний11,12, и в этих условиях предыдущие исследования использовали DMOG для демонстрации потенциальных терапевтических преимуществ ингибирования PHDs13,14.

Схема (созданная с помощью Biorender), изображающая химические структуры DMOG, MOG и NOG, их относительную клеточную проницаемость и клеточные мишени в зависимости от внутриклеточных концентраций NOG ([NOG]IC), которые они вызывают). ДМОГ преобразуется в МОГ, а затем в активный аналог αKG NOG. DMOG проницаем для клеток, тогда как MOG транспортируется через MCT2, что приводит к более высокому [NOG] IC по сравнению с тем, который вызывается DMOG. Высокий уровень [NOG]IC ингибирует не только PHD, но и метаболические ферменты. NOG не может пройти через плазматическую мембрану. б Анализ стабильности синтетического MOG с течением времени в цельной крови мышей методом ЖХ-МС (n = 3 технических повтора). в ЖХ-МС-анализ стабильности ДМОГ в цельной крови мышей с течением времени (n = 3 технических повтора). ДМОГ очень быстро превращается в МОГ, который также нестабилен и впоследствии образует NOG с кинетикой, аналогичной кинетике синтетического МОГ, измеренной в (b). В таблице показаны расчетные периоды полураспада превращения ДМОГ в МОГ и затем в НОГ или синтетического превращения МОГ в НОГ на основе данных, показанных на панелях (b и c). d Структуры замещающих аналогов метилового эфира глицината MOG, разработанные, синтезированные и опубликованные в этой работе. (i) более объемные алкиловые эфиры (2,3), (ii) α-метильные заместители (4–6), (iii) кетоновый аналог (7), (iv) 5-членные ароматические гетероциклы (8–10). e Синтетический путь получения аналогов MOG 2–10 показан на панели (d).

2-fold (dashed line) increase were considered to be taken up in an MCT2-dependent manner (n = 4, mean ± SD). e Left: Schematic (created with Biorender) illustrating the strategy for testing analogues 4–7 as putative MCT2 inhibitors). In cells treated with MOG, NOG inhibits metabolic enzymes and thereby leads to decreased respiration. Putative MCT2 inhibitors prevent MOG entry and are expected to attenuate MOG-induced inhibition of respiration. Right: Mean ± SD change in basal cellular respiration (calculated from the data shown in the middle panel) after treatment of INS1-EV or INS1-MCT2 cells with MOG in the presence or absence of the indicated MOG analogues. MOG does not inhibit respiration in the absence of exogenous MCT2 expression illustrating the specificity of the assay. AR-C155858 was used as a positive control for MCT2 inhibition. The ketone analogue 7 attenuates MOG-induced inhibition of respiration consistent with this compound being an MCT2 inhibitor. Significance tested using a one-way ANOVA with Dunnett’s test for multiple comparisons (n = 2–5 independent measurements). f LC-MS analysis to assess stability of MOG or the bulkier alkyl MOG analogues 2 and 3 in cell culture media over time (n = 3 independent replicates)./p>